2.43
1,65
1,98
0,73
1,88
1,81
2.43
2.2 Substàncies estàndard utilitzades en la corba de calibratge de la distribució de massa molecular relativa: insulina, micopèptids, glicina-glicina-tirosina-arginina, glicina-glicina-glicina
3 Instruments i equips
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20,8
23,9
27,5
En general, la proporció d'aminoàcids en els productes de Sustar és més alta que en els productes de Zinpro.
Part 8 Efectes de l'ús
Efectes de diferents fonts d'oligoelements sobre el rendiment de la producció i la qualitat dels ous de les gallines ponedores en el període de posta tardana
Procés de producció
Tecnologia de quelació dirigida
Tecnologia d'emulsificació per cisallament
Tecnologia de polvorització i assecat a pressió
Tecnologia de refrigeració i deshumidificació
Tecnologia avançada de control ambiental
Apèndix A: Mètodes per a la determinació de la distribució relativa de la massa molecular dels pèptids
Adopció de la norma: GB/T 22492-2008
1 Principi de prova:
Es va determinar mitjançant cromatografia de filtració en gel d'alta resolució. És a dir, utilitzant un farciment porós com a fase estacionària, basant-se en la diferència en la mida de la massa molecular relativa dels components de la mostra per a la separació, detectada a l'enllaç peptídic de la longitud d'ona d'absorció ultraviolada de 220 nm, utilitzant el programari de processament de dades dedicat per a la determinació de la distribució de massa molecular relativa mitjançant cromatografia de filtració en gel (és a dir, el programari GPC), es van processar els cromatogrames i les seves dades, calculant-los per obtenir la mida de la massa molecular relativa del pèptid de soja i el rang de distribució.
2. Reactius
L'aigua experimental ha de complir les especificacions d'aigua secundària de la norma GB/T6682 i els reactius utilitzats, excepte en disposicions especials, han de ser analíticament purs.
2.1 Els reactius inclouen acetonitril (cromatogràficament pur), àcid trifluoroacètic (cromatogràficament pur),
2.2 Substàncies estàndard utilitzades en la corba de calibratge de la distribució de massa molecular relativa: insulina, micopèptids, glicina-glicina-tirosina-arginina, glicina-glicina-glicina
3 Instruments i equips
3.1 Cromatògraf de líquids d'alt rendiment (HPLC): una estació de treball o integrador cromatogràfic amb un detector UV i programari de processament de dades GPC.
3.2 Unitat de filtració i desgasificació al buit en fase mòbil.
3.3 Balança electrònica: valor graduat 0,000 1 g.
4 passos d'operació
4.1 Condicions cromatogràfiques i experiments d'adaptació del sistema (condicions de referència)
- 4.1.1 Columna cromatogràfica: TSKgelG2000swxl300 mm × 7,8 mm (diàmetre interior) o altres columnes de gel del mateix tipus amb un rendiment similar adequades per a la determinació de proteïnes i pèptids.
- 4.1.2 Fase mòbil: Acetonitril + aigua + àcid trifluoroacètic = 20 + 80 + 0,1.
- 4.1.3 Longitud d'ona de detecció: 220 nm.
- 4.1.4 Cabal: 0,5 mL/min.
- 4.1.5 Temps de detecció: 30 min.
- 4.1.6 Volum d'injecció de la mostra: 20 μL.
- 4.1.7 Temperatura de la columna: temperatura ambient.
- 4.1.8 Per tal que el sistema cromatogràfic complís els requisits de detecció, es va estipular que, en les condicions cromatogràfiques anteriors, l'eficiència de la columna cromatogràfica en gel, és a dir, el nombre teòric de plaques (N), no fos inferior a 10000 calculat sobre la base dels pics de l'estàndard tripèptid (Glicina-Glicina-Glicina).
- 4.2 Producció de corbes estàndard de massa molecular relativa
- Les solucions estàndard de pèptids amb diferents masses moleculars relatives esmentades anteriorment, amb una concentració en massa d'1 mg/mL, es van preparar mitjançant la coincidència de fase mòbil, es van barrejar en una proporció determinada i després es van filtrar a través d'una membrana de fase orgànica amb una mida de porus de 0,2 μm a 0,5 μm i es van injectar a la mostra, i després es van obtenir els cromatogrames dels estàndards. Les corbes de calibratge de la massa molecular relativa i les seves equacions es van obtenir representant gràficament el logaritme de la massa molecular relativa respecte al temps de retenció o mitjançant regressió lineal.
4.3 Tractament de mostres
Pesar amb precisió 10 mg de mostra en un matràs aforat de 10 ml, afegir una mica de fase mòbil, agitar per ultrasons durant 10 minuts, de manera que la mostra es dissolgui completament i es barregi, diluir amb la fase mòbil fins a l'escala i després filtrar a través d'una membrana de fase orgànica amb una mida de porus de 0,2 μm ~ 0,5 μm, i analitzar el filtrat segons les condicions cromatogràfiques de A.4.1.
- 5. Càlcul de la distribució de massa molecular relativa
- Després d'analitzar la solució de mostra preparada al punt 4.3 en les condicions cromatogràfiques del punt 4.1, la massa molecular relativa de la mostra i el seu rang de distribució es poden obtenir substituint les dades cromatogràfiques de la mostra a la corba de calibratge 4.2 amb un programari de processament de dades GPC. La distribució de les masses moleculars relatives dels diferents pèptids es pot calcular mitjançant el mètode de normalització de l'àrea del pic, segons la fórmula: X=A/A total×100
- A la fórmula: X - La fracció en massa d'un pèptid de massa molecular relativa en el pèptid total de la mostra, %;
- A - Àrea del pic d'un pèptid de massa molecular relativa;
- Total A: la suma de les àrees dels pics de cada pèptid de massa molecular relativa, calculada amb un decimal.
- 6 Repetibilitat
- La diferència absoluta entre dues determinacions independents obtingudes en condicions de repetibilitat no ha de superar el 15% de la mitjana aritmètica de les dues determinacions.
- Apèndix B: Mètodes per a la determinació d'aminoàcids lliures
- Adopció de la norma: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 Reactius i materials
- Àcid acètic glacial: analíticament pur
- Àcid perclòric: 0,0500 mol/L
- Indicador: indicador cristal·lí violeta al 0,1% (àcid acètic glacial)
- 2. Determinació d'aminoàcids lliures
Les mostres es van assecar a 80 °C durant 1 hora.
Col·loqueu la mostra en un recipient sec perquè es refredi naturalment a temperatura ambient o fins a una temperatura utilitzable.Pesar aproximadament 0,1 g de mostra (amb una precisió de 0,001 g) en un matràs cònic sec de 250 mL.Procediu ràpidament al següent pas per evitar que la mostra absorbeixi humitat ambiental.Afegiu-hi 25 mL d'àcid acètic glacial i barregeu-ho bé durant un màxim de 5 minuts.Afegiu 2 gotes d'indicador cristal·lí violetaValorar amb una solució estàndard de valoració d'àcid perclòric a 0,0500 mol/L (±0,001) fins que la solució canviï de color porpra al punt final.
Anoteu el volum de solució estàndard consumit.
- Realitzeu la prova en blanc alhora.
- 3. Càlcul i resultats
- El contingut d'aminoàcids lliures X en el reactiu s'expressa com a fracció màssica (%) i es calcula segons la fórmula: X = C × (V1-V0) × 0,1445/M × 100%, en la fórmula:
- C - Concentració de la solució estàndard d'àcid perclòric en mols per litre (mol/L)
- V1 - Volum utilitzat per a la valoració de mostres amb una solució estàndard d'àcid perclòric, en mil·lilitres (mL).
- Vo - Volum utilitzat per al blanc de valoració amb solució estàndard d'àcid perclòric, en mil·lilitres (mL);
M - Massa de la mostra, en grams (g).
| 0,1445: Massa mitjana d'aminoàcids equivalent a 1,00 mL de solució estàndard d'àcid perclòric [c(HClO4) = 1,000 mol/L]. | 4.2.3 Solució estàndard de valoració de sulfat de ceri: concentració c [Ce(SO4)2] = 0,1 mol/L, preparada segons GB/T601. | |
| Adopció de normes: Q/70920556 71-2024 | 1. Principi de determinació (Fe com a exemple) | Els complexos de ferro d'aminoàcids tenen una solubilitat molt baixa en etanol anhidre i els ions metàl·lics lliures són solubles en etanol anhidre. La diferència de solubilitat entre els dos en etanol anhidre es va utilitzar per determinar la velocitat de quelació dels complexos de ferro d'aminoàcids. |
| A la fórmula: V1 - volum de solució estàndard de sulfat de ceri consumit per a la valoració de la solució de prova, mL; | Etanol anhidre; la resta és igual que la clàusula 4.5.2 del document GB/T 27983-2011. | 3. Passos de l'anàlisi |
| Feu dues proves en paral·lel. Peseu 0,1 g de la mostra assecada a 103 ± 2 ℃ durant 1 hora, amb una precisió de 0,0001 g, afegiu-hi 100 ml d'etanol anhidre per dissoldre-ho, filtreu-ho, renteu el residu del filtre amb 100 ml d'etanol anhidre almenys tres vegades, després transferiu el residu a un matràs cònic de 250 ml, afegiu-hi 10 ml de solució d'àcid sulfúric segons la clàusula 4.5.3 de GB/T27983-2011 i, a continuació, realitzeu els passos següents segons la clàusula 4.5.3 "Escalfeu per dissoldre-ho i deixeu-ho refredar" de GB/T27983-2011. Realitzeu la prova en blanc al mateix temps. | 4. Determinació del contingut total de ferro | 4.1 El principi de determinació és el mateix que el de la clàusula 4.4.1 del document GB/T 21996-2008. |
4.2. Reactius i solucions
| 4.2.1 Àcid mixt: Afegiu 150 ml d'àcid sulfúric i 150 ml d'àcid fosfòric a 700 ml d'aigua i barregeu-ho bé. | 4.2.2 Solució indicadora de sulfonat de difenilamina sòdica: 5 g/L, preparada segons GB/T603. | 4.2.3 Solució estàndard de valoració de sulfat de ceri: concentració c [Ce(SO4)2] = 0,1 mol/L, preparada segons GB/T601. | |
| 4.3 Passos de l'anàlisi | Feu dues proves en paral·lel. Peseu 0,1 g de mostra, amb una precisió de 0,20001 g, poseu-la en un matràs cònic de 250 ml, afegiu-hi 10 ml d'àcid mixt, després de la dissolució, afegiu-hi 30 ml d'aigua i 4 gotes de solució indicadora de sulfonat de dianilina sòdica i, a continuació, realitzeu els passos següents segons la clàusula 4.4.2 del document GB/T21996-2008. Realitzeu la prova en blanc al mateix temps. | 4.4 Representació dels resultats | El contingut total de ferro X1 dels complexos de ferro d'aminoàcids en termes de fracció màssica de ferro, el valor expressat en %, es va calcular segons la fórmula (1): |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - solució estàndard de sulfat de ceri consumida per a la valoració de la solució en blanc, mL; | V0 - solució estàndard de sulfat de ceri consumida per a la valoració de la solució en blanc, mL; | C - Concentració real de la solució estàndard de sulfat de ceri, mol/L5. Càlcul del contingut de ferro en quelatsEl contingut de ferro X2 en el quelat en termes de la fracció màssica de ferro, el valor expressat en %, es va calcular segons la fórmula: x2 = ((V1-V2) × C × 0,05585)/m1 × 100 |
| A la fórmula: V1 - volum de solució estàndard de sulfat de ceri consumit per a la valoració de la solució de prova, mL; | V2 - solució estàndard de sulfat de ceri consumida per a la valoració de la solució en blanc, mL;nom1-Massa de la mostra, g. Preneu la mitjana aritmètica dels resultats de la determinació paral·lela com a resultats de la determinació, i la diferència absoluta dels resultats de la determinació paral·lela no és superior al 0,3%. | 0,05585 - massa de ferro ferrós expressada en grams equivalent a 1,00 mL de solució estàndard de sulfat de ceri C[Ce(SO4)2.4H20] = 1,000 mol/L.nom1-Massa de la mostra, g. Preneu la mitjana aritmètica dels resultats de la determinació paral·lela com a resultats de la determinació, i la diferència absoluta dels resultats de la determinació paral·lela no és superior al 0,3%. | 6. Càlcul de la taxa de quelacióTaxa de quelació X3, el valor expressat en %, X3 = X2/X1 × 100Apèndix C: Mètodes per a la determinació de la taxa de quelació de Zinpro |
Adopció de la norma: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reactius i materials
a) Àcid acètic glacial: analíticament pur; b) Àcid perclòric: 0,0500 mol/L; c) Indicador: indicador cristal·lí al 0,1% (àcid acètic glacial)
2. Determinació d'aminoàcids lliures
2.1 Les mostres es van assecar a 80 °C durant 1 hora.
2.2 Col·loqueu la mostra en un recipient sec perquè es refredi naturalment a temperatura ambient o fins a una temperatura utilitzable.
2.3 Pesar aproximadament 0,1 g de mostra (amb una precisió de 0,001 g) en un matràs cònic sec de 250 mL
2.4 Procediu ràpidament al pas següent per evitar que la mostra absorbeixi humitat ambiental.
2.5 Afegiu-hi 25 ml d'àcid acètic glacial i barregeu-ho bé durant un màxim de 5 minuts.
2.6 Afegiu-hi 2 gotes d'indicador cristal·lí violeta.
2.7 Valorar amb una solució estàndard de valoració d'àcid perclòric a 0,0500 mol/L (±0,001) fins que la solució canviï de porpra a verd durant 15 s sense canviar de color com a punt final.
2.8 Anoteu el volum de solució estàndard consumida.
2.9 Realitzeu la prova en blanc alhora.
- 3. Càlcul i resultats
- Català
- Physicochemical parameters
V1 - Volum utilitzat per a la valoració de mostres amb una solució estàndard d'àcid perclòric, en mil·lilitres (mL).
Vo - Volum utilitzat per al blanc de valoració amb solució estàndard d'àcid perclòric, en mil·lilitres (mL);
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Adreça: No.147 Qingpu Road, Shouan Town, Pujiang County, Chengdu City, Sichuan Province, Xina
Telèfon: 86-18880477902
Productes
oligoelements inorgànics
- oligoelements orgànics
- Suahili
- Servei personalitzat
- Enllaços ràpids
Perfil de l'empresa
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gujarati | Feu clic per a la consulta | © Drets d'autor - 2010-2025: Tots els drets reservats. | Mapa del lloc CERCA PRINCIPAL Telèfon |
| Telèfon | 86-18880477902 | Javanès | Correu electrònic |
| 8618880477902 | xinès | Francès | |
| Bird | xinès | Francès | Alemany espanyol |
| Aquatic animals | Japonès | coreà | Àrab Grec |
| Turc | Italià | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | Indonesi Afrikaans Suec |
Polonès
- basc
- Català
- Physicochemical parameters
Hindi
Laos
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Xona
Búlgar
- Cebuà
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- Croat
neerlandès
| Application object | Urdú Vietnamita | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gujarati | haitià | Haussa | Kinyarwanda Hmong Hongarès |
| Piglets and fattening pigs | Igbo | Javanès | Kannada Khmer Kurd |
| Kirguiz | llatí | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | Macedonià Malai Malayalam |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
Noruec
- Paixtu
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
serbi
Sesotho
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Xona
Sindhi
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
Suahili
Tadjik
Tàmil
Telugu
Tailandès
| Application object | Urdú Vietnamita | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Jiddix | Ioruba | Zulu | Kinyarwanda Oriya turcman |
| Uigur | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1,52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
